WB 是一种用于检测蛋白质以及蛋白质翻译后修饰的常用方法，可以对简单或复杂生物样品中的目标蛋白质进行半定量或定量分析。

 

蛋白样品制备是 WB 实验的第一步，也是 WB 成功的关键步骤。但大家通常认为样品制备很简单，且方法单一，出错率极低，所以当 WB 失败时往往仅改变操作条件而忽视样品问题。其实 WB 实验内参不齐或检测不到、背景高、磷酸化蛋白检测困难、小 / 大分子量蛋白，脂化和膜相关蛋白无法检出等问题，都有可能是样品制备无效导致的，所以一定要注意样品制备中的细节，以保证蛋白样品的质量！

 

下面就为大家详细盘点一下从细胞，组织，培养基上清及血清血浆中制备样品的常见问题及注意事项。

一、 细胞样品

1. 细胞收集

悬浮细胞通过低速离心后收集进行蛋白提取。贴壁细胞可在培养器皿中直接进行蛋白提取，如器皿不易操作也可收集细胞后再进行蛋白提取。

Tips：贴壁细胞收集是刮下来好还是胰酶消化好？

两种方式都是可行的，各有利弊。胰酶消化可能会对某些膜蛋白产生影响，刮刀收集效率会略低，可根据自己的实验来选择细胞收集的方式。
 

2. 样品清洗

细胞样品在提取前需使用 PBS 清洗两遍，以减少培养基对样品的干扰（去除含血清培养基中的 BSA 及酚红指示剂等干扰）。
 

3. 细胞计数

蛋白提取前应进行细胞计数，用于确定需添加裂解液的量。合适的裂解液用量既能让细胞完全裂解，又可保证蛋白浓度，从而获得最佳提取效果。
 

4. 裂解液用量

Tips：裂解液加多少合适呢？

建议每1*10⁶个细胞（NIH3T3 和 293T 细胞 10 ul 湿体积相当于1*10⁶个细胞），加入 100 ul 裂解液为宜。可以根据不同细胞和具体实验条件进行摸索和调整。

 

5. 抑制剂的添加

抑制剂即加即用为好，可按蛋白酶 / 磷酸酶抑制剂原液倍数添加。例如：原液是 100x，则 1 ml 裂解液中添加 10 ul 抑制剂即可。

Tips：提蛋白时一定要加蛋白酶抑制剂和磷酸酶抑制剂吗？

蛋白酶抑制剂并非一定要加，但蛋白样品如果长期保存，或者下游实验过程较长，建议加入蛋白酶抑制剂。做磷酸化研究，一定要加入磷酸酶抑制剂！
 

6. 制备方法选择

WB 实验不要求蛋白具有活性，可选择能充分溶出所有蛋白质的裂解液配方，且应尽量去除样品中的细胞碎片和核酸残团。目前蛋白制备方法可分为裂解液法和柱式法两种。裂解液法蛋白提取（如 RIPA）为防止 DNA 完全解链致使样品粘稠无法处理，故裂解液效率较低，仅能提取样品中的可溶性蛋白（即上清部分，沉淀部分为不可溶性蛋白及核酸残团），而非总蛋白。柱式法蛋白提取（如 Invent SD-001）使用优化的裂解液配方提高样品裂解液效率的同时，利用离心管柱技术有效处理粘稠的核酸残团，不产生沉淀，1 分钟可获得高质量的总蛋白样品。如遇到样品粘稠无法处理，或研究膜蛋白，核蛋白等难溶蛋白时，尽量选择柱式法蛋白提取。

 

7. 样品裂解

加入裂解液后，可反复吹打与样品充分接触混匀，以确保样品中的蛋白zui大程度溶解于裂解液中。如使用裂解液法提取，离心后要避免扰动沉淀，小心吸取上清保存待用。

 

二、 组织样品

1. 样品取样与保存

组织样品的取样与保存非常关键，组织样品推荐的取样顺序：zui先取消化系统相关的组织（如胃、大小肠、肝脏、胰腺等）和富含巨噬细胞的组织（如肺），然后取生殖相关的组织（如卵巢、子宫、睾丸等），最后取心、脾、肾、脑等器官。肠道样品及含血丰富的样品，取样前可先进行灌洗等处理。取下的组织可以剪切成小块，如不马上使用，需冻存在液氮或 -80 度冰箱里。
 

2. 样品清洗

组织样品在提取前也需要用 PBS 清洗去除杂质和血液。一些含血量丰富的组织，建议使用红细胞裂解液（Invent WA-007）去除红细胞，以避免血液中 IgG 对后续实验的影响。

 

3. 样品使用量

组织样品需先称重，一般一次提取 15～20 mg 为宜，过多的样品会影响匀浆效果，增加细胞碎片数量，产生裂解不全等问题。

4. 样品匀浆

不同于细胞样品，组织样品提取时需要进行匀浆。可使用手动匀浆，也可使用机械匀浆。但通常匀浆方式和过程没有统一要求。使用不同的匀浆方式，匀浆力度和匀浆次数，均会造成人为误差，致使 WB 结果重复性差。所以使用何种方式匀浆需慎重选择。匀浆是为了使裂解过程更容易，但如裂解液效率不足，匀浆仅可增加可溶性蛋白的溶出，但难溶的蛋白（如膜蛋白，细胞器蛋白，核蛋白等）仍无法完全溶出。故需要根据样品和研究情况选择合适的提取方法。例如脑组织样品，较为柔软易匀浆可以手动完成，而皮肤，骨骼，韧带，血管等样品，匀浆极其困难，裂解效果差，建议选择专用试剂盒为好。

 

5. 裂解液用量

通常建议每 10 mg 样品，加入 100 ul 裂解液为宜。

抑制剂的添加，制备方法选择及样品裂解方式与细胞样品相同。

 

三、培养基上清

WB 检测分泌型蛋白时，理论上直接使用培养基上清检测最为理想。但通常分泌型蛋白含量较低，且含血清的培养基中含有非常丰富的 BSA（牛血清白蛋白，66 KDa）。当目标蛋白在 40～60 kDa 之间时，WB 检测会受到较为严重的干扰。因此建议采用无血清培养基培养后收集上清，然后利用沉淀方法进行分泌型蛋白富集，富集的沉淀重悬溶解后使用。传统沉淀方法主要是 TCA / 丙酮沉淀法，但其对蛋白质浓度较低的样品效率很低，蛋白损失较大。推荐使用沉淀方法：Invent WA-006 Minute^TM 蛋白沉淀试剂盒。低浓度的蛋白样品可以有效沉淀和浓缩，且沉淀的蛋白质很容易重悬溶解于含表面活性剂的溶液中。

需注意：

Tips：无血清培养基在任何情况下都可以使用吗？

无血清培养基可能会改变细胞的生理状态（可能激活未知信号途径，诸如 AKT 等），所以需根据自身实验考虑是否使用。

 

四、血清血浆

血清血浆中含有大量白蛋白，占血液中总蛋白质的 50～60%。所以用血清血浆样品做 WB 时，低丰度蛋白检出率极差，白蛋白会严重干扰电泳分辨率及转膜效率。所以血清血浆样品进行 WB 前，去除白蛋白可有效提高其他低丰度蛋白检出效率。推荐使用白蛋白去除方法：Invent WA-013 Minute^TM 血清血浆样品白蛋白去除试剂，可以处理几微升到几毫升的样品。90% 以上的白蛋白可以在不到 5 分钟内被除去。

Tips：蛋白样品如何储存？

以上各类样品蛋白制备完成后，推荐使用 BCA 法进行蛋白浓度测定，随后在样品中加入 loading buffer 混匀，煮样 3～5 分钟后冰上静置少许时间进行低速离心，即可上样。剩余样品建议分装后保存，样品可以在 4℃ 冰箱短时间保存，也可以在 -20 或 -80℃ 保存，解冻后可重新煮沸上样。

WB 实验步骤比较繁琐，细节决定成败，掌握了以上样品制备方法，加上科学的对照设置，正确的抗体选择，细致的实验操作和每步监测，定会获得 WB 的成功！

 

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